碘酸-雪夫(AB-PAS)染色试剂盒 B1136
规格:46x50mL
保存:2-8℃，避光保存，有效期6个月。
产品组成:
名称 4x50mL 4x100mL 保存
试剂(A):氧化剂 50mL 100mL 2-8℃，避光
试剂(B):Schiff 染色液 50mL 100mL 2-8℃，避光
试剂(C):苏木素染色液 50mL 100mL 室温.避光
试剂(D):酸性分化液 50mL 00mL 室温
产品介绍:
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用PAS技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。
氧化剂能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，酷与 Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于氧化剂还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好氧化剂的浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把/二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的。
本糖原 PAS 染色液的特点:采用 Solarbio 特有配方技术，大大增强了染色效果;性能稳定，特异性强操作简捷，仅需 1h左右。
自备材料:
10%福尔马林固定液、蒸馏水、乙醇
操作步骤(仅供参考):
1.常规固定，常采用10%的福尔马林，常规脱水包埋。
2.石蜡切片脱蜡入蒸馏水;冰冻切片直接入蒸馏水。
3.自来水冲洗2-3min，再用蒸馏水浸洗2次。
4.置于氧化剂中，室温放置5-8min,般不宣超过10min。
5.自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗 2次。
6.样本放入Schi任染色液，置于室温阴暗处，浸染 10-20min。
7.自来水冲洗10min。
8.样本置于苏木素染色液中，染细胞核 1-2min
9.酸性分化液分化2-5s。
10.自来水冲洗10-15min 使其返蓝。
11.逐级常规《醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。
注意事项:
1.切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
2.氧化剂氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18-22℃最佳
3.氧化剂和 Schiff染色液应置于 4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前，最好提前 30min 取出恢复到在室温后，避光暗处使用。
4.酸性分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5.在氧化剂和 Schif 染色液中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。
6.本染色液常用于常规组织切片染色，对于直菌、细胞、极其源的切片，建议买购糖原 PAS 染色试剂盒(细胞真菌专用)，因为其氧化剂和苏木素溶液浓度更低,不宜过染。
7.冷冻切片染色时间尽量要短。
8.为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。